实用protocol介绍！ELISA样本准备完全指南
请参阅随试剂盒提供的实验方案，了解有关样品制备和兼容性样品类型的产品特定详细信息。
该指南适用于制备 ELISA 测定法中用到的常规样本，而最优的样品制备程序可根据所需测定靶标及测定方法作相应调整。选用新测定方法时，建议查阅相关文献选择与您样本相似的实验步骤作为参考。
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将细胞培养上清移至离心管，4℃，1,500 rpm 离心 10 分钟。
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立即进行上清液的分装并于 -80℃ 保存。避免反复冻融。
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将细胞培养板放置在冰上。
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吸出培养基并用预冷 PBS 轻轻漂洗细胞一次。
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弃去 PBS ，向 100 mm 培养板加入 0.5ml 提取缓冲液。
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收集细胞，然后移至经过预冷的离心管中。
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短暂涡旋后冰上孵育 15-30 分钟
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4℃ 13,000 rpm 离心 10 分钟，沉淀不溶性内容物。
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将上清（这里是指可溶性细胞提取物）分装至预冷的离心管中，并于 -80℃ 保存。尽可能减少反复冻融次数。
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将细胞接种到含完全（含血清）生长培养基的培养容器中，使细胞增殖达到预期的融合度。
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弃去培养基，用预温 PBS 小心洗涤。重复洗涤步骤。
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弃去 PBS 洗涤液并小心加入无血清培养基。
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孵育 1-2 天。
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将培养基移至离心管，4℃ 1,500 rpm 离心 10 分钟。
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立即分装上清并于 -80℃ 保存。避免反复冻融。
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收集样品，10,000 x g 4℃离心 2 分钟。
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分装上清液并于 -80℃ 保存。避免反复冻融。
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将全血收集到含抗凝剂的管中，例如 BD 抗凝真空采血管（目录号：363080/363080）或添加 0.1M 柠檬酸钠至 1/10 终体积。
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4℃ 3,000 rpm 离心 10 分钟。
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立即分装上清（血浆）并于 -80℃ 保存。避免反复冻融。
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收集样品，10,000 xg 4℃离心 2 分钟。
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分装上清并于 -80℃ 保存。避免反复冻融。
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收集样品，4℃ 10,000 xg 离心 2 分钟。
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立即分装上清并于 -80℃ 保存。避免反复冻融。
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将全血收集到未经处理的测试管中，或者到不含抗凝剂的管中，如 BD 血清用真空采血管（目录号：367812)。
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室温孵育 20 分钟。
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4℃ 3,000 rpm 离心 10 分钟。
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立即分装上清（血清）并于 -80℃ 条件下保存。避免反复冻融。
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用干净的工具解剖组织，最好在冰上、尽快进行，以防止被蛋白酶降解。
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将组织置于圆底的微量离心管中，并浸入液氮中 “速冻”。将样品保存在 -80℃ 以便后续使用或放置在冰上进行直接匀浆。
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对于约 5 mg 的组织块，可向管中添加约 300 µl 完全提取缓冲液（查看细胞/组织提取缓冲液配方），然后用电动匀浆器匀浆。
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清洗刀片两次，每次清洗使用 300µl 完全提取缓冲液，然后在 4℃ 下维持恒定搅拌 2 小时（例如置于冷室中的回旋振荡器上）。
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4℃ 13,000 x rpm 离心 20 分钟。置于冰上，将上清液（这里是指可溶的蛋白质提取物）分装至新、预冷的管中并在 -80℃ 保存。避免反复冻融。
裂解缓冲液的体积必须根据所用组织的量进行确定。最终蛋白质提取物的浓度一般 > 1 mg/mL。
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100 mM Tris，pH 7.4
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150 mM NaCl
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1 mM EGTA
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1 mM EDTA
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1% Triton X-100
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0.5% 脱氧胆酸钠
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磷酸酶抑制剂混合物
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蛋白酶抑制剂混合物
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PMSF
使用前，按照厂家描述加入磷酸酶和蛋白酶抑制剂混合物以及终浓度为1mM的PMSF。
通用建议
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推荐的蛋白质提取物浓度为至少 1-2 mg/mL。
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通常，可用缓冲液将血清、血浆、细胞和组织提取物稀释2倍。
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样品融化后，使用前，将样品在 4℃ 10,000 x rpm 离心 5 分钟以除去沉淀。